В острой стадии кольпита больная жалуется на загрязнение нижнего белья влагалищными выделениями. Последние отличаются от нормальных по цвету, запаху и количеству. В случае слизистого катара выделения вязкие, тянущиеся, мутноватые. Примесь гноя к слизистому отделяемому влагалища придает выделению желтоватый цвет, а примесь эритроцитов – сукровичный вид. Если в белях отмечается примесь пузырьков газа, то в этом случае выделения пенистые, с неприятным рыбным запахом – это типично для трихомонадного кольпита. При микотическом поражении выделения из влагалища имеют белый цвет и творожистый вид. Выделения часто сопровождаются зудом, иногда отечностью и покраснением наружных половых органов. Половые сношения бывают болезненные. Часто к кольпиту присоединяются дизурические расстройства и боли в нижней части живота или спине. Температура обычно  при остром кольпите не повышается, она может достигать субфебрильных цифр при кольпите с глубоким поражением стенок влагалища.

           В хронической стадии кольпита основной жалобой больных являются жалобы на выделения из половых путей, реже беспокоят зуд и неприятные ощущения в области влагалища. Хронический кольпит характеризуется длительным течением и склонностью к рецидивированию.

           Течение кольпитов может быть острым, подострым, вялотекущим, хроническим, латентным и бессимптомным. Диагноз кольпитов ставится на основании анамнеза, жалоб больной, клинической картины и результатов обследования. Тщательно собранный анамнез позволяет выявить природу выделений. Наряду с оценкой внешнего вида рекомендуется использовать лакмусовую бумагу для определения рН. При невозможности провести бактериологическое и бактериоскопическое исследование показатель рН выделений из влагалища может сыграть положительную роль. Так, если рН ниже 4,5, то можно думать о кандидозном поражении. При рН выше 4,5 можно заподозрить трихомоноз. Исследование больной влагалищными зеркалами позволяет обнаружить типичные признаки воспаления или атрофические изменения влагалищного эпителия. Однако особенно большую информацию можно получить при микроскопическом исследовании нативных мазков, бактериологическом изучении выделений с посевом содержимого влагалища на питательные среды, а также при проведении целого ряда современных методов обследования больных.

           Бактериологическое и бактериоскопическое исследование позволяет уточнить специфический или неспецифический характер кольпита. При посеве на питательные среды можно определить чувствительность микрофлоры к антибиотикам. Прямая микроскопия неокрашенных нативных препаратов используется для диагностики трихомоноза, бактериального кольпита и кандидоза при наличии влагалищных выделений.

           Чтобы получить пробу для исследования, необходимо взять ее из заднего свода тонким ватным тампоном. Полученную пробу немедленно помещают на предметное стекло и быстро разбавляют каплей изотонического раствора хлорида натрия, затем на стекло накладывают покровное стекло, на которое предварительно наносят исследуемый материал. Полученный препарат сразу же помещают на столик микроскопа и исследуют под малым увеличением (х40) при слабом освещении.

           При трихомонозе в препарате четко выражена специфическая картина, имеющая диагностическое значение. Трихомонады обладают характерными прерывистыми и толчкообразными движениями, в нативном препарате выглядят как прозрачные организмы грушевидной формы, равные по размерам лейкоциту. Они имеют четыре передних жгутика и аксостиль, который пронизывает в виде стержня все тело паразита. Трихомонады в нативном препарате вскоре теряют характерные толчкообразные движения и их ундулирующие мембраны становятся видимыми, особено при большом увеличении. Для бактериального кольпита характерны замена лактобациллярной флоры влагалища другими определенными группами бактерий и изменение свойств влагалищной жидкости. Типичный рыбный запах этой жидкости усиливается при добавлении к пробе влагалищных выделений 2 капель 10% раствора гидроксида калия. Это так называемый «обонятельный» тест.

           Количество лейкоцитов находится в пределах нормы или незначительно повышено. Число эпителиальных клеток в одном поле зрения под микроскопом превышает число лейкоцитов. При трихомонозе определяется более значительное количество лейкоцитов. При бактериальном кольпите выявляются «ключевые» клетки, которые представляют собой клетки ороговевшего, чешуйчатого эпителия, покрытые коккобациллами. Вследствие этого их поверхность становится неотчетливой, а в цитоплазме видны гранулы. В нативных микроскопических препаратах можно четко обнаружить дрожжи. Диагностику облегчает добавление 10% раствора СаОН, который ведет к разрушению скоплений эпителиальных клеток, после чего микроскопическая картина становится более ясной.

           Помимо микроскопии нативныхпрепаратов алгоритм бактериоскопического исследования выделения из влагалища включает прямую микроскопию окрашенных препаратов. Для приготовления мазков полученную пробу быстро переносят на предметное стекло, где материал распределяют тонким слоем с помощью тампона или петли , мазок высушивают на воздухе, затем фиксируют, трижды быстро проводя через верхнюю часть пламени горелки. Следует избегать чрезмерного нагревания мазка. Окраску мазков проводят по Граму, метиленовым синим или сафранином. Однако окраска по Граму имеет преимущество, так как позволяет идентифицировать диплококки.

           При подозрении на гонорею окрашенные препараты исследуют под масляной иммерсией. Гонококки (грамотрицательные диплококки) имеют форму почек или бобов кофе, размером 0,6-0,8 мкм. Наличие этих диплококков в полиморфноядерных лейкоцитах является высокоспецифичным для гонореи признаком. В отношении хламидий и микоплазм следует иметь ввиду, что микробиологические методы определения этих прокариотов трудны, дороги и плохо воспроизводимы. Хламидии образуют цитоплазматические включения – тельца Провачека в эпителии влагалища, которые можно обнаруживать при окраске препарата по методу Романовского-Гимзы. Но этот метод недостаточно чувствителен и специфичен.

           Указанных недостатков лишен метод иммунолюминесценции с использованием моноклональных антител против основного белка наружной мембраны хламидии. Перспективен метод ДНК-гибридизации. Иммуноферментный метод дает дает перекрестные реакции с эшерихиями, гонококками, стрептококками, группы В и другими микробами. При поверхностных формах хламидиоза развивается низкий гуморальный ответ с невысокими титрами антител. Вследствие этого самый чувствительный и специфичный метод диагностики хламидиоза – культивирование возбудителей на клеточных культурах МсСоу, L-929, Hela-229. Для транспортировки исследуемого материала пригодны среда 199, среда Игла и среды с добавлением антибиотиков, к которым резистентны хламидии (пенициллин, стрептомицин, геитамицин). Пробы хранят не более суток при плюс 4єС и не более 2 недель при минус 70єС. Ответ получается не раньше 72 часов с начала исследования. Персонал при этом подвергается высокой опасности заражения.

          Назад